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EnkiLife(恩玑生命)带你全面了解WB(Western blot、蛋白免疫印迹)实验!

发表时间:2025-12-10

一、什么是WB?

WB(Western blot),即蛋白质免疫印迹法,它常被称为蛋白质分析的“金标准”,广泛应用于医学研究、药物开发和法医鉴定等领域。

简单来说,它就像一个“分子筛”加上一个“特异性探针”:首先把蛋白质按大小分开,然后用一种能特异性识别目标蛋白的“探针”去捕获它。

二、为什么要做WB(Western blot)?

一句话:做WB(Western blot)是为了“看见”并验证某个蛋白质是否真的存在、有多少、是否被修饰。它几乎是所有生命科学研究的“标配”实验,离开它,很多结论就缺了“最后一公里”的证据。

下面把“为什么要做WB(Western blot)”拆成6个真实场景,看完就知道它在研究链里扮演什么角色。

1.验证基因操作是否“落地”到蛋白
? 敲除/敲低/过表达某个基因后,mRNA变化≠蛋白变化。
? 只有WB(Western blot)能告诉你:这条带是消失了、变弱了,还是变强了。
? 缺WB(Western blot),基因功能研究只走到“半场”。

2.给组学数据“验真身”
? 转录组、蛋白质组筛到差异分子后,必须挑几个关键蛋白做WB(Western blot)复核。
? 期刊审稿人几乎必问:“Provide Western blot validation”。
? WB(Western blot)是组学故事的“质检章”。

3.定位信号通路“哪一环被激活/抑制”
? 磷酸化抗体WB(Western blot)可一眼看出:MAPK、AKT、NF-κB…哪条轴被点燃。
? 用“磷酸化/总蛋白”灰度比,可定量活性变化。
? 没有WB(Western blot),信号通路图只能是“虚线”。

4.比较不同样本/处理/时间点的蛋白表达量
? 药物处理、缺氧、热激、放疗、感染…WB(Western blot)给出半定量柱状图。
? 配合内参校正,可做统计学差异。
? 让“表型”与“分子”真正挂钩。

5.评价抗体/标记基因是否“靠谱”
? 新抗体上市,厂家数据可能“美颜”。
? 自己跑WB(Western blot),一条干净条带=抗体特异性过关。
? 避免下游免疫荧光、IP、ChIP全部翻车。

6.临床前/临床样本的分子标志物初筛
? 血清、活检、PDX模型,先用WB(Western blot)快速验证候选标志物是否值得开发ELISA或IHC。
? 成本低、通量中等、周期短。
? 转化医学的“桥头堡”。

一句话总结,WB(Western blot)是把“基因”、“组学”、“表型”串成故事的那根“蛋白级”证据链;少了它,很多结论只能停留在“推测”阶段。

三、WB(Western blot)的原理及实验操作步骤

1. 原理:SDS 给蛋白“穿相同负电荷外衣”→ 电泳按分子量“排队”→ 电场把队伍“复印”到膜上→ 抗体“夹心”标记目标蛋白→ 化学发光“拍照”。
即:“变性分离—转印—免疫识别—信号显影” 四连跳。

2.WB(Western blot)实验操作步骤

Western blot步骤

关键试剂/仪器

易错点

耗时

① 样品制备

RIPA+蛋白酶/磷酸酶抑制剂+loading buffer

忘记煮样 5 min 或煮过头

30 min

② SDS-PAGE

分离胶浓度按蛋白大小选(12 % 通用)

胶不聚合、漏液、气泡

1 h

③ 转膜

湿转 100 V 1 h 或 25 V 过夜;PVDF 提前甲醇激活

“三明治”夹反→蛋白进滤纸

1 h

④ 封闭

5 % 脱脂奶粉/TBST 或 3 % BSA(磷酸化蛋白)

封闭不足→高背景;过度→信号弱

1 h

⑤ 一抗

4 °C 摇床过夜;抗体稀释比先摸条件

忘记回收抗体;不洗膜→高背景

过夜 + 3×5 min 洗

⑥ 二抗

HRP-抗兔/鼠稀释,室温 1 h

二抗交叉(物种错)

1 h + 3×5 min 洗

⑦ 显影

ECL A+B 1:1 混合;暗室或成像仪

曝光过度→条带糊;欠曝→看不见

1 min–5 min


四、WB(Western blot) 翻车集锦 = “没信号、杂带、背景黑、条带扭曲、定量飘忽” 五连杀。

下面按“症状→原因→急救/预防”三栏速查,实验台 3 min 内就能对症换药或改条件。

1. 无信号(白板)

? 原因 1:蛋白本来就低丰度 + 上样量 ≤10 μg
→ 急救:加到 30–50 μg;或富集(IP、亚细胞组分)。
? 原因 2:抗体失效/稀释过稀
→ 急救:新抗体 1:200 起步梯度摸;老抗体加 0.02 % NaN? 的 4 °C 存 1 个月即弃。
? 原因 3:转膜反向或 PVDF 未甲醇激活
→ 急救:丽春红染膜看是否有蛋白;反向重转。
? 原因 4:HRP 底物失活
→ 急救:ECL A/B 各滴一点到枪头尖,暗室看是否闪蓝光;不闪即换。

2. 高背景(全膜黑)

? 原因 1:封闭不足/奶粉过期
→ 预防:5 % 脱脂奶粉新鲜配,4 °C 不超过 3 天;磷酸化改用 3 % BSA。
? 原因 2:一抗浓度过高
→ 急救:梯度 1:500–1:2000 重摸;高背景立刻多洗 3×10 min + 0.1 % Tween-20。
? 原因 3:二抗交叉反应
→ 预防:同物种 IgG 预吸附二抗;室温 1 h 缩短到 45 min。
? 原因 4:膜干
→ 急救:显影过程保持膜湿润,曝光完立即 TBST 泡。

3. 杂带/多条带

? 原因 1:抗体特异性差
→ 急救:siRNA 敲减或 KO 样本跑对照,杂带不消失→换抗体。
? 原因 2:蛋白降解
→ 预防:RIPA 加蛋白酶抑制剂 + 1 mM PMSF;样品煮沸后 ?20 °C 不超过 1 周。
? 原因 3:二聚体/糖基化
→ 验证:样品 + β-ME 100 °C 10 min 再跑;或 PNGase F 去糖基化看条带下移。

4. 条带扭曲(笑脸、拖尾)

? 原因 1:胶不聚合或 APS/TEMED 失效
→ 预防:APS 4 °C 存 1 个月即弃;插梳前看界面是否消失。
? 原因 2:上样量 >50 μg/孔或盐浓度过高
→ 急救:BCA测定后稀释到相同 RIPA 浓度;脱盐柱处理。
? 原因 3:电泳过热
→ 预防:恒压 80 V 积层,后 100 V 分离;冰浴循环水或换缓冲液。

5. 定量飘忽(三次重复误差 >30 %)

? 原因 1:内参条带饱和
→ 急救:内参上样 5 μg 起步,曝光灰度 0.3–0.7 线性区;饱和即再稀释样品。
? 原因 2:转膜不完全
→ 验证:转膜后考马斯染胶 + 丽春红染膜,残留 >20 % 重摸转膜时间/电流。
? 原因 3:strip 过度
→ 预防:50 °C 15 min 即可;磷酸化蛋白建议同膜不同荧光通道(免 strip)。

6. 特殊翻车彩蛋

? ECL 底物“闪一下就消失”——信号太快来不及拍
→ 换用 Pierce SuperSignal Femto 长辉型,或 CCD 成像仪连拍 30 帧自动叠加。
? 磷酸化条带“今天有明天无”——样品反复冻融
→ 分装 20 μl/管,一次用完;液氮速冻 ?80 °C。
? 膜上现“幽灵条带”——之前 strip 残存 HRP
→ strip 后加 3 % H?O? 室温 15 min 灭活 HRP,再封闭。

WB(Western blot)翻车 90 % 是“浓度、时间、温度”三角失衡导致,并常因流程复杂、结果不稳定成为科研痛点。为此,EnkiLife(恩玑生命)全新推出的2h极速WB即用型全流程试剂盒,不仅将实验时间缩短至2小时,更通过创新设计确保结果高度可重复。

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2. 全流程优化:从样本处理到显色曝光一体化解决方案,无需额外试剂。

3. 结果可靠:优异重复性和批次一致性,CV值<5%,实验间差异极小。

4. 快速孵育技术:专有快速封闭液和抗体稀释液封闭仅10分钟,一抗15分钟,二抗5分钟

5. 即用型设计:预制胶、即用Marker和预配颗粒,开盒即用,简化实验准备。

6. 实验安全:即用预制胶,无异味缓冲液,避免接触丙烯酰胺等有毒试剂


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