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多重免疫荧光实验指南及常见FAQ

发表时间:2025-12-23


一、三步锁定最优技术方案

第一步:明确核心需求——判断是单一靶标定性,2-3个靶标共定位还是3个以上靶标网络解析。

第二步:匹配技术性能——高丰度单靶标选IHC,2-3个靶标选普通IF,复杂多靶标或低丰度靶标必选TSA。

第三步:权衡成本与效率——IHC成本最低、周期最短;普通IF成本中等、周期较短;TSA成本较高、周期较长,但数据价值远超成本投入。

二、关键技术要点:

  1. 抗原修复:抗原修复通常使用1×柠檬酸(PH6.0)或EDTA(PH9.0)作为修复液,高温高压修复,将切片至于高压锅中,加入适量的修复液,关上高压锅,待上汽后计时 2min,冷却至室温,修复完毕。【如遇骨组织、脑组织等易掉片组织,则采用微波修复,修复温度控制在 80℃左右,修复液可用2×柠檬酸(PH6.0)。】
  2. 内源性酶阻断:用纯水配制3%H2O2溶液,将切片放于溶液中,室温孵育20min。如遇易掉片组织,可适当降低H2O2的孵育时间。
  3. 抗体选择与稀释:优先使用单克隆抗体。如果是小鼠样本,尽量避开选择小鼠来源一抗,若选择小鼠一抗,二抗除了与一抗结合,还会结合组织内源性的IgG,产生非特异性着色。一抗稀释比例需通过预实验确定,浓度过高易导致非特异性结合,过低则信号微弱。建议设置浓度梯度筛选最佳条件。
  4. TSA 染料使用规范:TSA 染料为光敏性物质,工作液需现配现用。低表达靶标选择荧光强度高、抗淬灭性强的染料(如 Cy5、AF594),利用 TSA 信号放大效应增强检出率。高表达靶标选择荧光强度适中的染料(如 FITC、Cy3),避免信号饱和掩盖细节。
  5. 避免光谱重叠:选择发射波长间隔≥50nm 的染料组合,例如:DAPI(461nm)+ AF488(519nm)+ Cy3(570nm)+ Cy5(670nm),可有效减少串色。避免同时使用 FITC(520nm)和 AF488(519nm)、Cy3(570nm)和 AF594(617nm)。
  6. 结合成像设备:荧光型 TSA 需确认荧光通道是否与实验室显微镜波长兼容。普通荧光显微镜时,共聚焦和多光谱显微镜均可以使用,实验前需确定自己仪器的通道/滤光片数量,优先选择跟仪器滤光片匹配的荧光染料。
  7. 抗体洗脱效率:如果有些抗体效价高,亲和力较强,不易洗脱彻底,可增加洗脱次数,在操作过程应注意切片平放。易脱片样本可降低洗脱液温度或缩短孵育时间。

三、多重免疫荧光实验常见FAQ

1. 多重标记实验时,如何确定需要使用几色荧光标记?

答:①靶标需求:靶标总数决定最低色数,低丰度和互作靶标需独立通道,无关联靶标可分批次检测。②仪器能力:确定自己仪器的通道/滤光片数量,优先选择跟仪器滤光片匹配的荧光染料。③实验可行性:色数越多串扰、成本、分析难度越高。珍贵样本需多色,普通样本可少色分批次。④参考规范:借鉴同类研究及试剂厂商建议,优先保障核心靶标通道。

2. 免疫荧光,两个同种属抗体该怎么染?

答:可选择TSA 双标三色方案,先完成第一个靶标的 TSA 染色并进行抗体洗脱,避免二抗交叉结合。再进行第二个靶标的 TSA 染色,最后加核染。

3. TSA实验时一二抗如何洗脱?

答:通常使用EDTA(pH9.0)或柠檬酸修复缓冲液(pH6.0)进行高温高压洗脱。针对一些容易掉片的组织,可以选择温和洗脱方式,如采用抗体洗脱液,室温/37℃孵育5-15min即可。

4. 染第二轮时第一轮易掉色如何处理?

答:可能是因为荧光底物不稳定、化学试剂损伤或抗原流失。解决方法如下:①选用共价结合型 TSA 底物(如 Alexa Fluor 系列);②抗体洗脱时采用更温和的洗脱方式或使用抗体洗脱液;③延长第一轮底物孵育时间,选用高强度底物提升初始信号;④或调整染色顺序,优先染高稳定性靶标,将易掉色抗原放在最后一轮染色。

5. 与普通荧光实验对比一抗稀释比例为多少?

答:首先,可以直接采用传统组化中确定的最优稀释度进行测试,作为对照组。若结果不理想,可进一步设计倍比稀释梯度,以探索TSA系统中一抗稀释度的敏感性与特异性平衡。

6. 荧光二抗染色效果不好可以使用TSA染色吗?

答:可以使用 TSA 染色,且 TSA 技术正是解决普通免疫荧光效果差的核心方案之一。因为两者的染色原理不同,TSA 通过 HRP 催化酪胺荧光底物在靶标上共价沉积,实现信号级联放大,能显著提升低丰度靶标的检出率,弥补荧光二抗染色信号弱的问题。同时,TSA 底物与抗原共价结合,不易被洗涤洗脱,且背景低,改善荧光二抗因非特异性结合导致的染色效果差。

7. 样本为小鼠,是否可以选择小鼠来源的一抗?

答:通常不建议采取这种方式,因为如果一抗来源于小鼠,那么二抗也需使用抗小鼠的二抗,这可能会与样本中本身存在的IgG发生交叉反应,从而导致非特异性结合。若必须使用与样本同种属来源的一抗,建议进行阴性对照实验,即在未添加一抗的情况下,仅加入二抗,以检测是否会产生非特异性信号。

8. 做多标时,指标/抗体顺序如何选择?

答:难以洗脱的抗体,摆在最后一轮,不然容易串色。兔鼠一抗交叉做。比较难做的指标放在前面几轮做。低表达靶标选择荧光强度高、抗淬灭性强的染料,并放在前几轮做。高表达靶标选择荧光强度适中的染料,避免信号饱和掩盖细节。若两种蛋白共表达,建议选择波长差异大的。

9. 实验操作过程需要避光吗?染好的片子可以保存多久?

答:Enklife TSA试剂盒的荧光染料具有优异的抗淬灭性能,无需刻意进行避光操作。但使用过程中也需避免暴露在太阳光下直射,及长时间曝光。染色玻片在4℃条件下通常可保存6至12个月。

10. 能否使用冰冻漂片进行TSA实验?

答:TSA试剂盒不适用于漂片。因为漂片厚度太厚,不利于试剂的渗透,且漂片在操作过程中形态容易发生改变,如卷曲,褶皱等。

11. 做石蜡切片 mIHC,抗体应该怎样选择?

答:尽量选用单克隆抗体,抗体应用选用 IHC /mIHC/ IHC-P,优先选用经过敲除验证的抗体。


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